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关键词:鸭疫里默氏杆菌;流行病学;耐药性;疫苗研究;
鸭浆膜炎的病原是鸭疫里默氏杆菌(Riemerella anatipestifer,RA),2~8周龄的雏鸭感染后呈急性或慢性经过,其中14~21日龄的雏鸭最易感;同时该病原也能够导致鹅、火鸡和其他禽类发病。雏鸭感染后常因无有效的治疗方案,造成大量的死亡,即使耐过,雏鸭也会造成生长缓慢,饲料报酬率低,是水禽养殖行业重大经济损失的主要原因之一,严重影响了养鸭业的经济效益[1]。
鸭疫里默氏杆菌极易产生耐药性,除自身的固有耐药外,临床上大量抗菌药物的使用都加剧了耐药菌株的产生。鸭疫里默氏杆菌血清型共有20多种,在全国各地分布广泛,现有的商品化灭活疫苗,无法提供不同血清型菌株的交叉保护;Jiechi Zou等[2]使用同源重组方法缺失M949_1603基因(O抗原合成相关)构建的鸭疫里默氏杆菌菌株,毒力下降约50倍,制备的灭活疫苗能够对多个血清型的野毒株起到交叉保护作用,证实不同血清型间存在共同抗原蛋白。近年发展起来的新型反向疫苗学技术从病原的全基因组入手,使用计算机分析全基因组的开放阅读框,并进行蛋白的定位预测,分析定位表面蛋白的开放阅读框及细菌毒力相关的阅读框,对筛选的目标开放阅读框进行高通量表达和纯化,并测试其抗原性,有针对性地进行筛选,能够克服传统疫苗学方法不能解决的问题,为疫苗抗原的筛选提供了技术支持,极大提高了疫苗研制效率[3]。
鸭疫里默氏杆菌是引起雏鸭、鹅、火鸡和其它禽类感染全身性浆膜炎的病原体,属于黄杆菌科[4]。鸭疫里默氏杆菌通过伤口或者其他途径进入鸭体内繁殖,并随着血液循环到达全身器官,在体内各器官包括鸭脑部引起炎症,出现典型的气囊炎、包心包肝症状和脑膜炎症状。鸭浆膜炎的发生没有明显的季节性,通风不畅、育雏密度过大、营养不均衡和其他的应激因素都可能是本病发生的诱因。鸭疫里默氏杆菌对环境具有一定的耐受性,可伴随尘土、饲料、饮水等因素接触易感雏鸭,发病鸭成为新的传染源后,大量病原的存在会导致该病原的高感染率和死亡率。国内自1975年在广州地区首次发现,其后福建、北京、四川、江苏、湖北、广西、山东、河南、河北等地区陆续报道该病的发生,成为影响我国养鸭业健康发展的重要细菌性疾病。
鸭疫里默氏杆菌是一种革兰氏阴性菌,短杆状、近球形,偶见个别长丝状,有荚膜、无鞭毛,菌体大小约0.4μm×1.5μm[5]。该菌生长对培养基要求较高,建议使用加血清的胰酶大豆琼脂(TSA)进行培养,在血液琼脂、巧克力琼脂也能生长,大部分病原初次分离需要在蜡烛罐或者二氧化碳培养箱中进行,培养24 h或者时间更长一些,能够观察到透明、圆形、边缘光滑整齐,直径在1 mm以下的小菌落,该菌落具有蓝绿光芒。鸭疫里默氏杆菌血清型在全国各地分布广泛,同一养殖场同批鸭苗中也会存在多种血清型,这主要是由于鸭疫里默氏杆菌众多血清型所导致的。目前已知有25种鸭疫里默氏杆菌血清型,国际上报道的血清型为1~21型,我国学者程安春[6]报道的22~25型为国内新发血清型[7]。1987年高福等[8]对临床分离的鸭疫里默氏杆菌进行分型检测,所有菌株均为1型鸭疫里默氏杆菌。1997年张大丙等[9]发现鸭疫里默氏杆菌血清2、6、10、11、13、14及未知的血清型,其后汪铭书等[10,11,12]鉴定到3、4、5、8型,随后张大丙等[13,14]又鉴定了鸭疫里默氏杆菌血清7和15型,苏文良等[15]分离鉴定了血清9型鸭疫里默氏杆菌。目前,在我国分离到的所有鸭疫里默氏杆菌中,优势血清型为1、2、10型。
鸭疫里默氏杆菌极易产生耐药性,且菌体自身还存在着固有耐药,外加临床上大量抗菌药物的使用都加剧了鸭疫里默氏杆菌对于抗生素的耐药性[16]。治疗鸭疫里默氏杆菌病的常用药物包括抗菌素、抗菌中药[17];其中抗菌素包括氟苯尼考、卡那霉素、恩诺沙星、庆大霉素、硫酸链霉素等[18];抗菌中药常用的是大黄、黄连、板蓝根、蒲公英、石榴皮等。生产一线中,鸭疫里默氏杆菌的耐药谱常常非常广,达到20种药物,常常无药可用[19];使用PCR方法扩增贵州临床分离株中的6种抗药基因,与药敏试验表型结果耐药性在80%以上相符[20]。抗菌中药的预防效果不错,但是停药后仍然会出现复发的情况,而且使用成本高。随着社会对食品安全的要求越来越高、国家无抗养殖政策的推进等因素,疫苗免疫在鸭疫里默氏杆菌病的防治过程中发挥的作用越来越重要[21]。
预防鸭疫里默氏杆菌最有效的方法是定期进行免疫接种,通过提高鸭群自身的免疫功能,达到科学预防浆膜炎的发生[22]。种鸭免疫疫苗后,一是提高母源抗体滴度延长对雏鸭的保护期;二是种鸭免疫后减少自身带菌量,降低垂直传播的概率。雏鸭免疫疫苗后,激发自身的主动免疫系统,配合保健药物,能够有效降低在应激等条件下激发的浆膜炎症状和死亡率。目前,商品化的鸭疫里默氏杆菌疫苗有灭活苗和弱毒活疫苗,在浆膜炎的防控中发挥了较大的作用;但是由于该病原的血清型较多,存在疫苗株和区域流行株不一致的情况时,疫苗免疫效果不好。其中灭活疫苗的优势在于不散毒、安全性好,且便于储存和运输[23];灭活疫苗的劣势在于无法将内源性保护蛋白递呈给免疫系统,无法激发有效的细胞毒性T细胞反应,同时灭活疫苗需要多次免疫强化,增加了一定的劳动量。在活疫苗研究方面,国外研究学者在环境中筛选到了鸭疫里默氏杆菌1、2、5型自然弱毒株,制备成三价活疫苗,通过饮水或者气雾免疫鸭群后能够起到较好的保护效果,饲料中添加的金霉素或磺胺二甲氧嘧啶也不会影响疫苗的效果[24]。税芸和王小兰[25,26,27]分别构建铁离子代谢和Pnc A基因缺失弱毒疫苗株,毒力分别下降了约1万倍和49万倍,并对自身血清型强毒株起到了良好的保护效果。与油乳剂灭活苗相比,活疫苗的应用,能够有效激发粘膜免疫、体液免疫和细胞免疫,配合有效的佐剂,能够对鸭群提供全面的保护;同时,活疫苗通过气雾或者饮水免疫方式,能够节约劳动力,减少动物应激,提高生长速度和胴体品质。活疫苗较之灭活苗有诸多的优势,但是存在散毒和潜在感染的风险。基因工程亚单位疫苗,是通过人工的方式表达具有免疫原性的蛋白抗原[28],该疫苗可以降低鸭疫里默氏杆菌免疫后的副反应问题;另一方面通过筛选不同血清型的内在共有抗原制备疫苗,为不同血清型的病原提供交叉保护。针对荚膜抗原、外膜蛋白开展了较多的研究,部分研究取得了理想的保护效果[29,30,31];余波等[32]针对外膜蛋白omp A开展真核表达载体的构建及免疫原性研究,对雏鸭的保护率达到了100%;帕提古丽等[33]也开展了外膜脂蛋白RIEAN110的原核表达和免疫原性研究,证实其具有良好的免疫原性;苏敬良[34]和吕敏娜[35]分别开展了荚膜抗原的提取和免疫原性研究,对同血清型病原的攻毒保护率均达到了80%。
张自军,李书光.鸭疫里默氏杆菌研究进展[J].家禽科学,2021(04):45-48.
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